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 來源:實驗(yàn)動物那些事兒 日期:2023.11.07 

一種罕見病:肝豆狀(zhuàng)核變性及其動物模型

最近驚聞一位朋友因患一種名為肝豆(dòu)狀核變性的罕見病而離世,突感罕見病並不罕見,它往往就在我們身邊。因筆(bǐ)者對肝豆狀核變性研究有所涉獵,本文將對該病及其(qí)動物模型作簡要介紹。

01、首次發現及致(zhì)病機製

肝豆狀核變性又名Wilson病(Wilson’s disease,WD) ,1912年首次由Samuel Kinnear Wilson博士描述。該病表現為“漸進性豆(dòu)狀核退化”,在患(huàn)者的肝髒和大腦等器官中發現了過量的銅,該病在全球的患病率約為1/30000。經過多年研(yán)究,肝豆狀核變(biàn)性(WD)的發病機製已經研究的較為清楚,它是一種常染色體隱性遺傳銅代謝障礙疾病[1]。1993年三個獨立研究小(xiǎo)組幾乎同時發現了ATP7B基因為Wilson病的致病基因。該基因編碼銅轉運(yùn)P型 ATP酶 ( copper-transporting P-type ATPase,ATP7B)[2],WD患者攜(xié)帶發生突變的ATP7B基因,血清銅藍蛋(dàn)白合成及正常的銅代謝過程發生障礙,過量的銅沉積在組織器官中,如(rú)肝髒、大腦、腎髒、角膜中,其中最常受累的是(shì)肝髒和神經係統[3]。

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圖1.ATP7B蛋白結構圖

圖注:N-端包含六個結合銅的金屬結合結構域(MBD1-MBD6,青色);參與Cu配(pèi)位的殘基在膜內的位置為(wéi)CPC、YN和MXXXS;位於(yú)C末端的(de)兩個(gè)亮氨酸基序(1459LL和1487LL)對(duì)胞吞作用和TGN從質膜重新定位(wèi)至(zhì)關重要[4]。

02、臨床表現及診斷

WD患者在臨床表現上(shàng)包(bāo)括嚴(yán)重程度不等的肝(gān)損傷、持續性(xìng)血(xuè)清轉氨酶升高、急性(xìng)或慢性肝炎、代償(cháng)期或失代償期肝硬化和暴發性肝功能衰(shuāi)竭等[5]。神經係統的表現以椎體外係病(bìng)變症狀為主,包括僵硬、震(zhèn)顫、運(yùn)動遲緩、構音障(zhàng)礙、吞咽障礙、舞蹈症狀、癲(diān)癇發作等,精神症狀包括躁狂、性格改變、抑鬱等[6, 7]。此外腎髒、血液係統及骨關節等器官係統,也會出現(xiàn)相應的臨床症狀和體征。

患者出現以下一些症狀或指標可供臨床診斷:

1. 角膜K-F環是某些WD患(huàn)者一個比較明顯(xiǎn)的特征。K-F環為角膜邊緣(yuán)的黃綠色或黃灰色色(sè)素環,一般在手電(diàn)筒側光照射下肉眼可見,7歲以下患者一般無法檢出角膜K-F環。

2. 肝脾檢查:肝功能血清轉氨酶、膽紅素升高和(或)白蛋白降低;肝脾B超:常顯示肝實質光點(diǎn)增粗、回聲增強甚至結節狀改(gǎi)變;部分患者脾髒腫大;肝髒MRI檢查常顯示肝脂質沉積、不規則結節及肝葉萎縮等。

3. 采用銅(tóng)代謝相關生化檢查,銅藍蛋(dàn)白<120mg/L,24小時尿銅≥100μg。

4. 顱腦MRI檢查主要表現為殼核、尾狀核頭部、丘腦、中(zhōng)腦、腦橋及小腦T1低(dī)信號、T2高信號(hào),少數情況下(xià)可出現T1高信號或T1、T2均(jun1)低信號。

5. 基(jī)因篩查:對於臨床證據不足但又高度懷疑WD的患者,篩查ATP7B基因致(zhì)病(bìng)變異對診斷具有指導意義。

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圖2. 角膜邊緣黃色渾濁的K-F環

03、ATP7B突變類型及(jí)地理分布

ATP7B基因突變在不同種(zhǒng)族和地域中存在(zài)遺傳異質性。歐洲人群最常見的突變類型是14號(hào)外顯子(zǐ)上的 H1069Q突變,在意大利、瑞典和羅馬尼亞等(děng)地(dì)多見,臨床主要以錐體外係症狀為(wéi)主,如震顫、肌張力障礙、精(jīng)神症狀(zhuàng)等。亞洲人群最常見的突變類(lèi)型是(shì) 8號外(wài)顯子上的錯義突變R778L,以中國、韓國和日本最多見,臨床以肝髒方麵症狀為主,如肝功能異常、肝(gān)硬化、肝脾大等;其餘常見的還有 P992L、Q1399R等[8]。

04、肝(gān)豆狀核(hé)變性動(dòng)物模型

1. “毒乳”( toxic milk,TX)小鼠

肝豆狀核變性動物模型(xíng)中最(zuì)有名的是一種“毒乳”( toxic milk,TX)TX小鼠。 “毒乳”小鼠(shǔ)這一名稱源自雌性純合子TX小鼠乳汁(zhī)中缺(quē)乏銅,因此其哺乳的幼鼠在2周(zhōu)左右時會由於(yú)銅缺(quē)乏而死(sǐ)亡。後(hòu)續研究證明“毒乳”為ATP7B基因突(tū)變小鼠。

TX小鼠又(yòu)分為兩種,一種是1974年由Harold Rauch在DL近交(jiāo)係小鼠F68代(dài)中發(fā)現的(de)自然突變,後來(1996年)被鑒定為ATP7B基因外顯子20中(zhōng)4066位的A到G堿基變(biàn)化(huà),導致第八跨膜區M1356V(甲硫氨酸(suān)to纈氨酸)的改變。TX鼠於第3周(zhōu)開始出現銅在髒器的沉積,首先是肝髒(zāng)和腦,以肝髒為重,至(zhì)第4個月銅沉積最為顯著(zhe),可達對(duì)照組的60~80倍(bèi)。同期腎髒(zāng)亦有大量沉積。這種由肝至腦再到腎的銅沉積(jī)過程與WD患(huàn)者的一般(bān)臨床病程相(xiàng)似[9]。

另一種TX小鼠是1987年在傑克遜(xùn)實驗室的C3H/HeJ群體中出現的自然突變品係TX-J小鼠,現對外出(chū)售,編號001576。該突(tū)變小鼠是ATP7B基因外顯子8中2135位的G到A的堿基突(tū)變。與TX小鼠相似,TX-J小鼠與WD患者以相似的方式在肝髒(zāng)中積(jī)累銅,成年純合子TX-J小鼠會發展為肝硬化。

TX和TX-J小鼠不(bú)能完(wán)全模擬WD患者,其角(jiǎo)膜無K-F環;與WD患者的(de)肝髒損(sǔn)傷也有顯著差異;且沒有關於人類WD母親的嬰兒銅(tóng)缺乏現(xiàn)象的報告;另外TX小鼠缺乏明顯神經係(xì)統症狀,TX-J小(xiǎo)鼠也隻有(yǒu)輕微的行為異常。但TX和TX-J小鼠ATP7B mRNA的轉(zhuǎn)錄水平沒(méi)有明顯改(gǎi)變(biàn)且ATP7B基因功(gōng)能部(bù)分保留,並具有與WD患者相類似的病理過程和銅生化特(tè)征(zhēng),同時也由於其容易獲(huò)得,是目前使用最多的WD動物模型之一,廣(guǎng)泛應用於一些治療藥物的(de)試驗。

2. ATP7B基因修飾小鼠

利用同源重(chóng)組技術或(huò)CRISPR基因編輯技術敲除ATP7B基因第2外顯子(zǐ)獲得的ATP7B-/-基因(yīn)敲除小(xiǎo)鼠也越來越多的被用於WD研究(jiū)。ATP7B-/-基因敲除(chú)小鼠具有與人(rén)類WD和TX小鼠相似的銅沉積表型,但與TX鼠(shǔ)模型相比(bǐ)發病較早且肝損傷更嚴重(chóng),肝炎、壞死性炎症、膽管增殖、纖維化,甚至後續的腫瘤發生等症狀都比TX鼠更接近(jìn)人類WD的肝髒病理結(jié)果(guǒ)。

隨著(zhe)基因編輯技術的進展,采(cǎi)用(yòng)基因編輯工(gōng)具CRISPR/Cas9+ssDNA[10],或(huò)采用堿基編輯(Base Editor)、先導編輯(Primer editor)技術,結合胚胎操作術可以較輕鬆地在小鼠ATP7B基因上構建與人類WD同(tóng)源的(de)突變位點。理論上可以獲得更接(jiē)近人(rén)類WD特征的小鼠模型。

3. LEC(Long–Evans Cinnamon)大鼠

LEC大鼠是一種近交係突(tū)變大鼠,最初是從Long–Evans大鼠群體中分離出來(lái)的,它的ATP7B基因在3’端編碼區缺失了900個堿(jiǎn)基,以及下遊未翻譯區缺失了約(yuē)400個堿基。LEC大(dà)鼠主要表現出自發性肝銅異常積聚伴隨低血清銅和低銅藍蛋白,大約4月齡時出現暴發性(xìng)肝炎或暴(bào)發性肝衰(shuāi)竭、轉氨酶和膽紅素升高,部分或大量肝細胞壞死,病死率至少30%~40%,存活下來的大鼠多在12月齡時發生肝纖維化並伴有肝細胞癌(ái)和膽管癌。由於肝病進展迅速(sù),LEC大鼠特別適合幹預治療研究,如各種(zhǒng)排銅絡合劑和幹細胞治療研究(jiū)等(děng)。

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圖3. LEC(Long–Evans Cinnamon)大鼠

4. 其他(tā)大型(xíng)哺乳(rǔ)動物模型

一些大(dà)型哺乳動物在銅代謝方麵也存(cún)在遺傳缺陷,均表現出(chū)銅在肝髒(zāng)中積累和銅毒性,例(lì)如犬(杜賓犬、拉布拉多尋回犬(quǎn)、貝靈頓梗犬Bedlington Terrier)和北羅納(nà)德賽羊等。然而這些大型哺乳動物銅(tóng)代謝方麵(miàn)的(de)遺傳缺陷與人類WD並不相同(tóng),如貝靈頓梗犬,導致其肝銅積累的遺傳缺陷是由於COMMD1(MURR1)基因(yīn)39.7kb的(de)刪除,而非ATP7B基因,故作為人類WD模(mó)型的作用有其局限性[11, 12]。若能在大型哺乳動物甚至非人靈長類動物的ATP7B基因中(zhōng)引入突變,或將造就更好模擬人類WD的動物模型。

05、肝豆狀核變性的治療

在目前(qián)的治療方案中,WD患(huàn)者需進行終(zhōng)生治療,主要目標為治療銅過載。基本原(yuán)則包括低銅飲(yǐn)食:避免或限製富(fù)含銅的食物,如肝髒、水生貝殼類動物(wù)、堅果、巧克力、豆類、蘑菇等。藥物治療(liáo)方(fāng)麵以青黴胺、曲恩汀為代表的金屬絡合劑(jì)增加銅的排除,以鋅劑為(wéi)代表的藥物減少銅的吸收。治(zhì)療越早越好,患者通常不能停藥,因為治療中斷很可能導致失(shī)代償性肝損傷及神經不可逆損傷。

值得注意的是WD的藥物治(zhì)療有(yǒu)一定的(de)局限性,除需要終生治療外(wài),約1/3 WD患者用藥期間會出現與藥物相(xiàng)關的不良事件,導致不得不更換藥物,甚至可能導致治療(liáo)失敗,WD晚期導致的肝衰竭或失代償期肝硬化需(xū)要進行肝移植,這可能是最後的常規治療手段。

鑒於(yú)WD是非常明確的由ATP7B基因突變所致(zhì)的疾病,因此基因治療或許有廣闊的(de)前景。目前已有(yǒu)基於動物(wù)模型的WD基因治療研究。如Murillo等在(zài)研究中用編碼人ATP7B cDNA的AAV8載體轉(zhuǎn)導到ATP7B-/-小鼠模型的肝髒,發現治療後血(xuè)清轉(zhuǎn)氨酶降(jiàng)低,尿銅排泄量減少,血清(qīng)全血漿蛋白(bái)的正(zhèng)常化[13]。此外,2019年Liu等通過CRISPR/Cas9替換了小鼠模型中ATP7B基(jī)因的(de)第8外顯子(zǐ)[14];2020年Michael等(děng)使用CRISPR/Cas9+ssODN的方(fāng)法(fǎ)糾正人類細(xì)胞(bāo)係中的ATP7B點突(tū)變[15]。筆者嚐試用一種ABE堿基編輯器輸入(rù)到TX-J小鼠肝髒,觀察到了小鼠血清轉氨酶降低,以及(jí)低比例的肝(gān)細胞ATP7B點突變被糾正(數(shù)據不展(zhǎn)示(shì))。總之,基因治療的進展為WD患者帶來了希望(wàng),但基因治療還處於基礎研究到臨床研究(jiū)轉化(huà)的階段,還有很多不成(chéng)熟的地(dì)方(fāng)需要不斷完善和革新。期望它將來能成為治療肝豆狀核變性的一線療法。

參考文(wén)獻:

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2.Gomes, A. and G.V. Dedoussis, Geographic distribution of ATP7B mutations in Wilson disease. Annals of Human Biology, 2016. 43(1): p. 1-8.

3.Rodriguez-Castro, K.I., F.J. Hevia-Urrutia, and G.C. Sturniolo,Wilson’s disease: A review of what we have learned. World journal of hepatology, 2015. 7(29): p. 2859.

4.Ariöz, C., Y.Z. Li, and P. Wittung-Stafshede, The six metal binding domains in human copper transporter, ATP7B: molecular biophysics and disease-causing mutations. Biometals, 2017. 30(6): p. 823-840.

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7.Hedera, P., Update on the clinical management of Wilson’s disease. The application of clinical genetics, 2017. 10: p. 9.

8.黃豔,劉誌峰, 肝豆狀核(hé)變性ATP7B基因(yīn)突變的研究(jiū)進(jìn)展.醫學綜述, 2019. 025(009): p. 1717-1721.

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10.朱基彥, et al., 利用CRISPR/Cas9構建R778L類型肝豆狀核變性疾病小鼠模型.基礎(chǔ)醫(yī)學與臨床, 2018. 38(12): p. 6.

11.楊玉龍, et al., 肝豆狀核變性動物模(mó)型的研究進展.臨床肝膽病雜誌, 2022. 38(5): p. 6.

12.Fieten, H., et al., New canine models of copper toxicosis: diagnosis, treatment, and genetics. Human Disorders of Copper Metabolism I, 2014. 1314: p. 42-48.

13.Murillo, O., et al., Long-term metabolic correction of Wilson's disease in a murine model by gene therapy. Journal of Hepatology, 2016. 64(2): p. 419-426.

14.Liu, L.L., et al., Exon Replacement in the Mouse Gene by the Cas9 System. Human Gene Therapy, 2019. 30(9): p. 1079-1092.

15.Pöhler, M., et al., CRISPR/Cas9-mediated correction of mutated copper transporter ATP7B. Plos One, 2020. 15(9).

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